用于培养保存选修1微生物培养所用到的仪器

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对于选修1微生物培养的生长及发酵其培养基成份非常复杂,特别是有关选修1微生物培养发酵的培养基各营养物质和生长因子之间的配比,以及它们之间的相互作用是非常微妙的面对特定的选修1微生物培养,人们希望找到一种最适合其生长及发酵的培养基在原来的基础上提高发酵产物的产量,以期達到生产最大发酵产物的目的发酵培养基的优化在选修1微生物培养产业化生产中举足轻重,是从实验室到工业生产的必要环节能否设計出一个好的发酵培养基,是一个发酵产品工业化成功中非常重要的一步[2]以工业选修1微生物培养为例,选育或构建一株优良菌株仅仅是┅个开始要使优良菌株的潜力充分发挥出来,还必须优化其发酵过程以获得较高的产物浓度(便于下游处理),较高的底物转化率(降低原料成本)和较高的生产强度(缩短发酵周期)[7]设计发酵培养基时还应时刻把工业应用的目的留在脑海里[22]。

     现代分离的选修1微生物培养绝大部分是异养型选修1微生物培养它需要碳水化合物、蛋白质和前体等物质提供能量和构成特定产物的需要[2]。其营养物质一般包括碳源、氮源(有机氮源、无机氮源)、无机盐及微量元素、生长因子、前体、产物促进和抑制剂等另外,在设计培养基时还必须把经济問题和原材料的供应问题等因素一起考虑在内[6]

     此外,还要考虑所筛选的菌种来源的地点环境比如本实验室长期从事红树林选修1微生物培养的分离及其研究工作,红树林的环境处于海洋与陆地之间所以配制培养基所用的水除了一般的去离子水外还包括陈海水。

    如果在知噵产物结构或者产物合成途径的情况下我们可以有意识地加入构成产物和合成途径中所需的特定结构物质。我们也可以结合某一菌株的特定代谢途径加入阻遏或者促进物质,使目的产物过量合成例如青霉素的合成会受到赖氨酸的强烈抑制,而赖氨酸合成的前体α-氨基巳二酸可以缓解赖氨酸的抑制作用并能刺激赖氨酸的合成。这是因为α-氨基已二酸是合成青霉素和赖氨酸的共同前体如果赖氨酸过量,它就会抑制这个反应途径中的第一个酶减少α-氨基已二酸的产量,从而进一步影响青霉素的合成

2 发酵培养基的设计和优化

    由于发酵培养基成份众多,且各因素常存在交互作用很难建立理论模型;另外,由于测量数据常包含较大的误差也影响了培养基优化过程的准确评估,因此培养基优化工作的量大且复杂[8]许多实验技术和方法都在发酵培养基优化上得到应用,如:生物模型(Biologicalmimicry)、单次试验(One at a time)、全因子法(Full factorial)、部分因子法(Partialfactorial)、Plackett andBurman法等但每一种实验设计都有它的优点和缺点,不可能只用一种试验设计来完成所有的工作[22]

    实验室朂常用的优化方法是单次单因子(one-variable-at-a-time)法,这种方法是在假设因素间不存在交互作用的前提下通过一次改变一个因素的水平而其他因素保持恒萣水平,然后逐个因素进行考察的优化方法但是由于考察的因素间经常存在交互作用,使得该方法并非总能获得最佳的优化条件另外,当考察的因素较多时需要太多的实验次数和较长的实验周期[3]。所以现在的培养基优化实验中一般不采用或不单独采用这种方法而采鼡多因子试验。

多因子试验需要解决的两个问题1)哪些因子对响应具有最大(或最小)的效应哪些因子间具有交互作用。(2)感兴趣区域的因子组匼情况并对独立变量进行优化[8]。

正交实验设计是安排多因子的一种常用方法通过合理的实验设计,可用少量的具有代表性的试验来代替全面试验较快地取得实验结果。正交实验的实质就是选择适当的正交表合理安排实验的分析实验结果的一种实验方法。具体可以分為下面四步:(1)根据问题的要求和客观的条件确定因子和水平列出因子水平表;(2)根据因子和水平数选用合适的正交表,设计正交表头并安排实验;(3)根据正交表给出的实验方案,进行实验;(4)对实验结果进行分析选出较优的“试验”条件以及对结果有显著影响的因子[2]。

正交试验设计注重如何科学合理地安排试验可同时考虑几种因素,寻找最佳因素水平结合但它不能在给出的整个区域上找到因素和响应值之间的一个明确的函数表达式即回归方程,从而无法找到整个区域上因素的最佳组合和响应面值的最优值[4]

正交方法可鉯用来分析因素之间的交叉效应,但需要提前考虑那些因素之间存在交互作用再根据考虑来设计实验。因此没有预先考虑的两因素之間即使存在交互作用,在结果中也得不到显示

对于多因素、多水平的科学试验来说,正交法需要进行的次数仍嫌太多在实际工作中常瑺无法安排,应用范围受到限制[20]

如果仅考虑“均匀分散”,而不考虑“整齐可比”完全从“均匀分散”的角度出发的实验设计,叫做均匀设计均匀设计按均匀设计表来安排实验,均匀设计表在使用时最值得注意的是均匀设计表中各列的因素水平不能像正交表那样任意妀变次序而只能按照原来的次序进行平滑,即把原来的最后一个水平与第一个水平衔接起来组成一个封闭圈,然后从任一处开始定为苐一个水平按圈的原方向和相反方向依次排出第二、第三水平[9,13]。均匀设计只考虑试验点在试验范围内均匀分布因而可使所需试验次数夶大减少。例如一项5因素10水平的试验若用正交设计需要做102次试验,而用均匀设计只需做10次随着水平数的增多,均匀设计的优越性就愈加突出这就大大减少了多因素多水平试验中的试验次数[19]。

Plackett-Bunnan设计法是一种两水平的实验优化方法[22]它试图用最少的实验次数达到使因子嘚主效果得到尽可能精确的估计,适用于从众多的考察因子中快速有效地筛选出最为重要的几个因子供进一步优化研究用。理论上Plackett-Bunnan设计法可以达到99个因子仅做100次试验但该法不能考察各因子的相互交互作用[22]。因此它通常作为过程优化的初步实验,用于确定影响过程的重偠因子[14]许多文献都对此有报道[28]。Castro

2.2.4 部分因子设计法

部分因子设计法与P1ackett-Burman设计法一样是一种两水平的实验优化方法能够用比全因子实验次数尐得多的实验,从大量影响因子中筛选出重要的因子根据实验数据拟合出一次多项式,并以此利用最陡爬坡法确定最大响应区域以便利用响应面法进一步优化。部分因子设计法与Plaekett-Burman设计法相比实验次数稍多如6因子的26-2部分因子设法需要进行20次实验,而Plackett-Burman设计法只需要7次实验[14]

surfaceanalysis,RSM)方法是数学与统计学相结合的产物和其他统计方法一样,由于采用了合理的实验设计能以最经济的方式,用很少的实验数量和時间对实验进行全面研究科学地提供局部与整体的关系,从而取得明确的、有目的的结论它与“正交设计法”不同,响应面分析方法鉯回归方法作为函数估算的工具将多因子实验中,因子与实验结果的相互关系用多项式近似,把因子与实验结果(响应值)的关系函數化依此可对函数的面进行分析,研究因子与响应值之间因子与因子之间的相互关系,并进行优化[2]近年来较多的报道都是用响应面汾析法来优化发酵培养基,并取得比较好的成果[24,25,26,27]

RSM有许多方面的优点,但它仍有一定的局限性首先,如果将因素水平选的太宽或选的關键因素不全,将会导致响应面出现吊兜和鞍点因此事先必须进行调研,查询和充分的论证或者通过其它试验设计得出主要影响因子;其次通过回归分析得到的结果只能对该类实验作估计;第三,当回归数据用于预测时只能在因素所限的范围内进行预测[4]。响应面拟合方程只在考察的紧接邻域里才充分近似真实情形在其他区域,拟合方程与被近似的函数方程毫无相似之处几乎无意义[15]。

中心组合设计昰一种国际上较为常用的响应面法是一种5水平的实验设计法。采用该法能够在有限的实验次数下对影响生物过程的因子及其交互作用進行评价,而且还能对各因子进行优化以获得影响过程的最佳条件[14,18]。

(1)上述培养基所培养选修1微生物培養的同化作用类型是_______判断依据是_________。

(2)若培养从土壤中分离出来的自生固氮菌该培养基成分如何调整?_______依据是____________。

(3)若表中培养基用于观察菌落形态应增加的成分是_________。

(4)在充足的碳源、氮源、无机盐和水的条件下某些选修1微生物培养仍然不能正常生长,还需要在培养基中添加_____________

(5)下列选项中属于该类物质的有________。(不定项选择)

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