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实验六不同给药途径对药物作用的影响
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官方公共微信实验一 实验动物给药途径和方法一、动物的编号、捉拿和固定。 动物的编号、捉拿和固定。 1、 动物的编号 犬、 兔等动物可用特制的号码牌固定于耳。 白色家兔和小动物可用 3-5% 的黄色苦味酸溶液涂于毛上标号。如编号 1-10 号时，将小白鼠背部分前肢、腰部、后 肢的左、中、右部共九个区域，从右到左 1-9 号，第 10 号不涂黄色(图 1-1)如加上其它颜色 的染料还
可进行 1-100 号和 1-1000 号等更多编号。图 1-1 小白鼠背部编号 （引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004）图 1-2 小白鼠双手捉持法 （引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004）2、动物的捉拿和固定 ①小鼠：右手抓住其尾，放在实验台上或鼠笼铁纱网上，在其向前爬时，左手拇指及食 指沿其背抓住两耳及头颈部皮肤， 并以左手的小指和掌部夹住鼠尾固定。 另一抓法是只用手， 用食指和拇指抓住鼠尾后再用小指和掌部夹住鼠尾， 以拇指及食指捏住其颈部皮肤。 前一种 方法易学，后一种方法便于快速捉拿。 （见图 1-2，1-3）图 1-3 小白鼠双手捉持法 （引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004）②大鼠：以右手或持夹子夹住尾巴，左手戴上防护手套固定头部防止被咬，应避免用力 过大造成大鼠窒息死亡。 根据实验需要麻醉或固定大鼠于鼠笼内或用绳绑其四肢固定于大鼠 手术板上。 ③豚鼠：以右手抓住豚鼠头颈部，将其两前肢在豚鼠头与右手拇指与食指之间，轻轻扣 住颈胸部，右手抓住两后肢(对体重较大的豚鼠则可托起其臀部)，使腹部向上。 ④兔：用手抓起兔脊背近后颈部皮肤，手抓面积应尽量大些。以另一手托起兔的臀部。 将兔仰卧固定时，一手抓住颈部皮肤，另一只手顺着腹部抚摸至膝关节处压住关节。另一人 将绳子用活结捆绑兔的四肢，使兔腹部向上固定在兔手术台上。头部则用兔头固定夹固定， 也可用棉线将兔的门牙固定于兔手术台上的柱子上，后者更常用(图 1-4)。图 1-4 家兔捉持法 （引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004）二、实验动物的去毛 动物去毛是手术野的皮肤准备之一。 原则是去毛范围应大于手术野， 不破坏皮肤的完整 性。具体方法有： 1、剪毛法 常用于兔犬去毛。操作时用剪刀紧贴皮肤依次剪毛，切忌提起皮肤，否则将剪 破皮肤。剪下的毛应放入盛有少量水的杯中，并可用湿纱布擦去已剪断的毛。 2、拨毛法：一般用于兔和犬的静脉输液部位。拨毛除使视野清晰外，还能刺激局部血管扩 张。 3、剃毛法：进行动物的慢性实验时用。 4、脱毛法：用于动物的无菌手术，一般先将手术野的毛剪短，用脱毛液在局部涂一层(注意 手不要直接接触脱毛液)， 2-3min 后用清水洗去脱落的毛， 待 再用纱布擦干后涂一层凡士林。 在此介绍两种脱毛液配方。配方 1：硫化钠 3，肥皂粉 1，淀粉 7，加水调成糊状。配方 2： 8%的硫化钠水溶液。 三、实验动物的药方法 在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动 物体内。给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情 况确定。 （一）皮下注射 注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有 5（1/2）号针头的注射器刺入皮下。皮下注 射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚鼠在后大腿的内侧或小腹部；大白鼠可在侧下腹部。兔 在背部或耳根部注射。蛙可在脊背部淋巴腔注射。 （二）皮内注射 皮内注射时需将注射的局部脱去被毛， 消毒后， 用左手拇指和食指按住皮肤并使之绷紧， 在两指之间，用结核菌素注射器连 4(1/2)细针头，紧贴皮肤表层刺入皮内，然后再向上挑起 并再稍刺入，即可注射药液，此时可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。 （三）肌肉注射 肌肉注射应选肌肉发达，无大血管通过的部位，一般多选臀部。注射时垂直迅速刺入肌 肉，回抽针栓如无回血，即可进行注射。给小白鼠、大白鼠等小动物作肌肉注射时，用左手 抓住鼠两耳和头部皮肤，右手取连有 5（1/2）针头的注射器，将针头刺入大腿外侧肌肉，将 药液注入。 （四）腹腔注射 用大、小白鼠做实验时，以左手抓住动物，使腹部向上，右手将注射针头于左（或右） 下腹部刺入皮下，使针头向前推 0.5-1.0cm，再以 45 度角穿过腹肌，固定针头，缓缓注入 药液（图 1-5） ，为避免伤及内脏，可使动物处于头低位，使内脏移向上腹。若实验动物为家兔，进针部位为下腹部的腹白线离开 1cm 处。图 1-5小白鼠腹腔注射方法图 1-6家兔耳缘静脉注射方法（五）静脉注射 1、兔：兔耳部血管分布清晰。兔耳中央为动物，耳外缘为静脉。内缘静脉深不易固定， 故不用。外缘静脉表浅易固定，常用。先拔去注射部位的被毛，用手指弹动或轻揉兔耳，使 静脉充盈， 左手食指和中指夹住静脉的近端， 拇指绷紧静脉的远端， 无名指及小指垫在下面， 右手持注射器连 6 号针头尽量从静脉的远端刺入， 移动拇指于针头上以固定针头， 放开食指 和中指，将药液注入（图 1-6） ，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。 2、小白鼠和大白鼠：一般采用尾静脉注射，鼠尾静脉有三根，左右两侧及背侧各一根， 左右两侧尾静脉比较容易固定，多采用，背侧一根也可采用，但位置容易固定。操作时先将 动物固定在鼠筒内或扣在烧杯中，使尾巴露出，尾部用 45-50℃的温水浸润半分钟或用酒精 擦拭使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，用 中指从下面托起尾巴，以无名指和小指夹住尾巴的末梢，右手持注射器连 4(1/2)号细针头， 使针头与静脉平行（小于 30℃） ，从尾下四分之一处（约距尾尖 2-3cm）处进针，此处皮薄 易于刺入，先缓注少量药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，可继续注入。注射完毕后把 尾部向注射侧弯曲以止血。如需反复注射，应尽可能从末端开始，以后向尾根部方向移动注 射（图 1-7） 。图 1-7小鼠尾静脉注射方法3、狗：狗静脉注射多选前肢内侧皮下头静脉（图 1-8）或后肢小隐静脉（图 1-9）注 射。注射前由助手将动物侧卧，剪去注射部位的被毛，用胶皮带扎紧（或用手抓紧）静脉近 端， 使血管充盈， 从静脉的远端将注射针头平行刺入血管， 待有回血后， 松开绑带 （或两手） ， 缓缓注入药图 1-8狗前肢头静脉注射图 1-9狗后肢小隐静脉注射4、蛙（或蟾蜍） ：将蛙或蟾蜍脑脊髓破坏后，仰卧固定于蛙板上，沿腹中线稍左剪开腹 肌，可见到腹静脉贴着腹壁肌肉下行，将注射针头沿血管平行方向刺入即可（图 1-10） 。 （六）淋巴囊注射 蛙类常采用此法，因其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收。腹部淋巴囊和头背淋巴 囊常作为蛙类给药途径。一般多选用腹部淋巴囊给药。注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经 大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液。有时也可采用胸淋 巴囊给药。方法是将针头刺入口腔，使穿过下颌肌层入胸淋巴囊内注入药液，一次最大注射 量为 1 毫升。蛙全身分布为咽、胸、背、腹侧、腹、大腿和脚等七个淋巴囊（图 1-11） 。图 1-10 蛙腹壁静静注射几种常用的动物不同给药途径的注射量可参考表 1-1。 表 1-1 几种动物不同给药途径的常用注射量（ml） 注射途径 腹 肌 静 皮 腔 肉 脉 下 小鼠 0.2-1.0 0.1-0.2 0.2-0.5 0.1-0.5 大鼠 1-3 0.2-0.5 1-2 0.5-1.0 豚鼠 2-5 0.2-0.5 1-5 0.5-2 兔 5-10 0.5-1.0 3-10 1.0-3.0 狗 5-15 2-5 5-15 3-10图 1-11 蛙全身淋巴囊分布（七）经口给药 在急性试验中，经口给药多用灌胃法，此法剂量准确，适用于小白鼠、大白鼠、家兔等 动物。 1、小鼠、大鼠（或豚鼠）用输血针头或小号腰穿针头，将其尖端斜面磨剂，用焊锡在 针尖周围焊一圆头，注意勿堵塞针孔，即成灌胃针；亦可用烧成圆头的硬质玻璃毛细管或特 制的塑料毛细秋，作为导管。灌胃时将针按在注射器上，吸入药液。左手抓住鼠背部及颈部 皮肤将动物固定，右手持注射器，将灌胃针插入动物口中，沿咽后壁徐徐插入食道。动物应 固定成垂直体位，针插入时应无阻力。若感到阻力或动物挣扎时，应立即停止进针或将针拔 出，以兔损伤或穿破食道以及误入气管。 一般当灌胃针插入小鼠 3-4 cm，大鼠或豚鼠 4-6 cm 后可将药物注入。常用的灌胃量小 鼠为 0.2-1 mL，大鼠 1-4 mL，豚鼠为 1-5 mL。 2、狗、兔、猫、猴 灌胃时，先将动物固定，再将特制的扩口器放入动物口中，扩口器 之宽度可视动物口腔大小而定，如狗的扩口器可用木料制成长方形，长约 10-15 cm，粗细 应适合狗嘴，约 2-3 cm，中间粘一小孔，孔的直途为 5-10 cm。灌胃时将扩口器放于上述动 物上下门牙之后，并用绳将它固定于嘴部，将带有弹性的橡皮导管（如导尿管） ，经扩口器 上的小圆孔插入，沿咽后壁而进入食道，此时应检查导管是否正确插入食道，可将导管外口 置于一盛水的烧杯中，如不发生气泡，即认为此导管是在食道中，未误入气管，即可将药液 灌入（图 1-12） 。图 1-12狗灌胃方法图 1-13狗小脑延髓池给药经大量实验，给狗、兔等动物灌胃时，可不用扩口器也能顺利将药液灌入胃内，狗灌胃 时，用 12 号灌胃管，左手抓住狗嘴，右手中指由右嘴角插入，摸到最后一对臼齿后的天然 空隙，胃管由此空隙顺食管方向不断插入约 20 cm，可达胃内，将胃管另一端插入水中，如 不出气泡，表示确已进入胃，而没误入气管内，即可灌入。兔灌胃时，将兔固定在木制固定 盒内左手虎口卡住并固定好兔嘴，右手取 14 号细导尿管，由右侧唇裂避开门齿，将导管慢 慢插入，如插管顺利，动物不挣扎，插入约 15cm 时，即表示插入胃内，将药液注入。 各种动物一次灌胃能耐受的最大容积小鼠为 0.5-1.0 mL，大鼠 4-7 mL，豚鼠为 4-7 mL， 家兔为 80-150 mL，狗为 200-500 mL。 （八）其它途径给药 1、呼吸道给药 呈粉尘、气体及蒸气或雾等症状存在药物或毒气，均需要通过动物呼 吸道给药。如一般实验时给动物乙醚作吸入麻醉，给动物吸一定量的氨气、二氧化碳等观察 呼吸、循环等变化；给动物定期吸入一定量的 SO2。锯末烟雾等可造成慢性气管炎动物模型 等；特别在毒物学实验中应用更为广泛。 2、皮肤给药 为了鉴定药物或毒物经皮肤的吸收作用、局部作用、致敏作用和光感作 用等，均需采用经皮肤给药方法。如家兔和豚鼠常采用背部一定面积的皮肤脱毛后，将一定 药液涂在皮肤上，药液经皮肤吸收。 3、脊髓腔内给药 此法主要用于椎管麻醉或抽取脑脊液。 家兔椎管内注射方法：将家兔作自然俯卧式，尽量使其尾向腹侧屈曲，用粗剪将第七腰 椎周围背毛剪去，用 3%碘酊消毒，干后再用 79%酒精将碘酒擦去。在兔背部髌骨脊连线之 中点稍下方摸动第七腰椎间隙（第七腰椎与第一骶骨椎之间） ，插入腰椎穿刺针头。当针到 达椎管内时（珠网膜下腔） ，可见到兔的后肢跳动，即证明穿刺针头已进入椎管。这时不要 再向下刺，以兔损伤脊髓。固定好针头，即可将药物注入。 4、小脑延髓池给药 此种给药都是在动物麻醉情况下进行的。而且常采用大动物如狗 等，小动物很少采用。将狗麻醉后，使狗头尽量向胸部屈曲，用左手摸到其第一颈椎上方的 凹陷（枕骨大孔） 固定位置，右手取 7 号钝针头（将针头尖端麻钝） 由此凹陷的正中线上， ， ， 顺平行狗的方向，小心地刺入小脑延髓池。当针头正确刺入小脑延髓池时，注射者会感到针 头再向前穿时无阻力，同时可以听到很轻的“咔嚓”一声，即表示针头已穿过硬脑膜进入小 脑延髓池，而且可抽出清亮的脑脊液，注射药物前，先抽出一些脑脊液，抽取量根据实验需 要注入多少药液决定，即注入多少抽取多少，以保持原来脑脊髓腔里的压力（图 1-13） 。 5、脑内给药 此法常用于微生物学动物实验，将病原体等接种于被检动物脑内，然后 观察接种后的各种变化。小鼠脑内给药时，选套有塑料管、针尖露出 2mm 深的 5(1/2)针头，由鼠正中额部刺入脑内，注入药物或接种物。给豚鼠、兔、狗等进行脑内注射时，须先用穿 颅钢针穿透颅骨，再用注射器针头刺入脑部，再徐徐注入被检物。注射速度一定要慢，避免 引起颅内压急骤升高。 6、直肠内给药 此种给药方法常用于动物麻醉。家兔直肠内给药时，取灌肠用的胶皮 管或用 14 号导尿管代替。在胶皮管或导尿管头上涂上凡士林，由助手使兔蹲卧于桌上，以 左臂及左腋轻轻按住兔头及前肢，以左手拉住兔尾，露出肛门，并用右手轻握后肢，实验者 将橡皮管插入家兔肛门内，浓度约 7-9 cm，如为雌性动物，注意勿误插入阴道（肛门紧接 尾根） 。橡皮管插好后，将注射器与橡皮管套紧，即可灌注药液。 7、关节腔内给药 此种方法常用于关节炎的动物模型复制。兔给药时，将兔仰卧固定 于兔固定台上，剪去关节部被毛，用碘酒或酒精消毒，然后用手从下方和两旁将关节固定， 把皮肤稍移向一侧，在膑韧带附着点处上方约 0.5 厘米处进针。针头从上前方向下后方倾斜 刺进，直至针头遇阻力变小，然后针头稍后退，以垂直方向推到关节腔中。针头进入关节腔 时，通常可有好象刺破薄膜的感觉，表示针头已进入膝关节腔内，即可注入药液。实验二 给药剂量对药物作用的影响给药剂量对药物作用的影响采用戊巴比妥钠实验法 【目 的 和 原理】 观察药物不同剂量对药物作用的影响。 药物剂量的大小决定血药浓度的高低， 血药浓度 又决定药理效应，因此药物剂量决定药理用强弱 【实 验 材 料 】 1、 动 物 ： 小 鼠 3 只 。 2、 药 品 ： 0.2%、 0.4%、 0.8%的 戊 巴 比 妥 钠 溶 液 。 3、 器 材 :鼠 笼 、 大 烧 杯 、 普 通 天 平 、 1 mL 注 射 器 。 【实 验 步 骤 】 1、 取 小 鼠 3 只 ， 标 记 ， 称 其 体 重 ， 观 察 小 鼠 正 常 时 的 活 动 情 况 。 2、 给 各 鼠 分 别 腹 腔 注 射 0.2%、0.4%、0.8%的 戊 巴 比 妥 钠 溶 液 0.1 ml/10g。剂 量 分 别 为 0.2 mg/10g、 0.4 mg/10g、 0.8 mg/10g。 3、 给 药 后 继 续 观 察 ，比 较 各 个 小 鼠 的 活 动 变 化 ，翻 正 反 射 消 失 与 恢 复 的 时 间 ，以 及呼吸的变化。 【结果记录】 记录并比较三只小白鼠出现的反应，分析不同给药剂量对药物效应的影响 药物反应 戊巴比妥钠剂量 小鼠 （ mg /10g 体 重 ） 蜷缩少动 闭目静卧 翻正反射消失 呼吸停止 1号 2号 3号 【注意事项】 1、翻正反射；正常动物可以保持站立姿势，如将其推倒或呈背位仰卧，动物立即翻正过来， 这种反射称为翻正反射。中枢神经受到严重抑制，翻正反射消失。 2、中枢抑制所表现的动物蜷缩少动、闭目静卧、翻正反射消失和呼吸停止，分别代表药物 的镇静、催眠、麻醉和呼吸麻痹四个过程。 【思 考 题 】药 物 的 剂 量 和 作 用 的 关 系 对 临 床 用 药 有 何 重 要 意 义 ?实验三给药途径对药物作用的影响给药途径对药物作用的影响采用硫酸镁实验法 【目的和原理】 硫酸镁为导泻、利胆、降压和抗惊厥药，口服不易吸收，并使肠内容物渗透压升高，水 分吸收减少，肠容积增大，刺激肠蠕动而泻下。注射给药可使血中 Mg2+增加，Mg2+阻止运 动神经末梢释放递质乙酰胆碱， 使骨骼肌松弛。 本实验观察不同给摇途径对硫酸镁作用性质 的影响。 【实验材料】 1、动物：小鼠 2 只。 2、药品：10%硫酸镁溶液 3、器材：小鼠灌胃器，大 烧 杯 、 普 通 天 平 、 1mL 注 射 器 、 烧 杯 。 【实验步骤】 1、取小鼠 2 只，标记，观察其正常情况(呼吸、活动及粪便)。 2、1 号鼠给 10%硫酸镁灌胃 0.15 mL/10g，2 号鼠给 10%硫酸镁肌注 0.15 mL/10g。 3、给药后观察并记录小鼠的情况（呼吸、活动及粪便） ，与给药前比较。 【结果整理及分析】 记录并比较两鼠所出现的反应，分析给药途径不同对药物的作用有何影响。 【注意事项】 灌胃方法要正确， 一旦刺破食管或胃壁， 药物进入胸腹腔， 其作用与肌注相同， 使对照实验失败。 【思考题】同一药物相同剂量以不同给药途径为什么会出现不同的药物反应？实验四 肝功能损伤对药物作用的影响实验目的】 【实验目的】 观察肝功能损伤对药物作用的影响。 【实验器材】 实验器材】 1、药品：10％四氯化碳(CCl4)油溶液，0.4％硫喷妥钠溶液，苦味酸溶液。 2、器材：天平、1mL 注射器、鼠笼、组织剪。 3、动物：小白鼠 4 只，体重 18-22 g，雌雄各半。 【实验方法】 在实验前 24 h 先取小鼠 2 只，10％四氯化碳油溶液 0.1 ml/10g 皮下注射, 实验方法】 造成肝损伤。实验时取给予四氯化碳的小鼠和正常小鼠各 2 只，称体重，以苦味酸溶液作好 标记。并试其翻正反射是否存在。(将小白鼠仰卧试验台上，若能恢复正常体位，为翻正反 射存在，否则为翻正反射消失)。接着均腹腔注射 0.4％硫喷妥钠 0.2 ml/10g，观察动物反 应。记录各鼠翻正发射消失时间和恢复时间。然后将小白鼠处死(用颈椎脱臼法)，剖视肝脏 观察形态改变，并注意肝脏形态改变与麻醉作用维持时间的关系。 【实验结果】 实验结果】0.4％硫喷妥钠 组 别 动物编号 （0.2mL/10g） 1 正常组 2 1 肝损害组 2 时间 消失时间 恢复时间 时间（min） 肝脏改变 给药 翻正反射 翻正反射 麻醉维持 解剖动物【注意事项 注意事项】 肝脏是药物代谢的主要器官， 肝功能不全时以肝代谢为主的药物易发生蓄积 注意事项 中毒。 四氯化碳是一种对肝细胞有严重毒性作用的化学物质， 中毒动物常被作为中毒性肝炎 的动物模型。 1、本实验采用四氯化碳皮下注射，剂量要准确，量少达不到破坏肝脏的目的，量大易造成 动物死亡。2、 四氯化碳造成小鼠肝损伤模型，肉眼可见肝脏充血肿大，出现灰黄色点片状坏死。注意 与正常小鼠对比。 3、如果已下课，小白鼠仍未从麻醉状态转为清醒，其麻醉作用维持时间则记作大于多少分 钟。 讨论】 【讨论】 1、该实验说明肝功能损害与药物作用有何关系？ 2、肝功能受损的病人临床上用药护理应注意什么问题？实验五 肾功能损害对药物作用的影响【实验目的】 观察肾功能损害对药物作用的影响。 实验目的】 实验材料】 【实验材料】 1、药品：2.5％链霉素溶液，0.1％氯化高汞溶液。 2、器材：天平、1mL 注射器、鼠笼或小白鼠观察盒。 3、动物：小白鼠 4 只，体重 18-22g，雌雄各半。 【实验方法】 实验方法】 、取正常小白鼠和肾功能已被破坏的小白鼠（实验前 24 h 腹腔注射 0.1％氯化 高汞 0.1 ml/10g,）各２只，称体重，分别由腹腔注射 2.5％链霉素溶液 0.15 ml/10g（375 mg／kg） ，观察小白鼠的活动情况（肌张力、活动情况、呼吸） 。比较两组小白鼠的变化有何 差别。 实验结果】 【实验结果】 组 别 动物编号 1 2 1 2 2.5％链霉素溶液 0.15mL/10g 给药后反应正常组肾损害组【注意事项 注意事项】 注意事项 1、本实验幼龄动物实验效果较好。 2、氯化高汞肾毒性大，汞与含巯基的酶结合破坏肾脏，导致肾功能障碍，使链霉素排泄减 慢而引起中毒，出现肌松弛、肌麻痹、甚至呼吸抑制而死亡，实验时亦可能正常小白鼠也出 现链霉素中毒，注意两组小鼠中毒程度的区别。 讨论】 【讨论】 1、注射链霉素后两组小白鼠的反应为什么不同？ 2、肾功能损害的病人临床上用药护理应注意什么问题？实验六 药物常用剂型的调制一、液体剂型的调制 （一）注射液的调制――10%安那加注射液的调制 【实验目的】熟悉液体剂型的调制方法。 【实验药品】精致安那加粉，重蒸馏水。 【实验器材】灭菌量筒，容量瓶，烧杯，玻璃棒，漏斗，滤纸，及三角架，酒精灯，石棉网， 天平等。 【实验方法】先将重蒸馏水加热煮沸 30 分钟，放冷至 80℃左右，取 15 mL 加入已灭菌的量 筒中，再加入精确称取的安那加粉 2 g，搅拌使其全部溶解后，再稍加重蒸馏水，过滤后至 所得滤液澄清透明不含任何杂质时，将液体转移至容量瓶中，加重蒸馏水定容至 20 mL，即 得 10%安那加注射液，灭菌后即可使用。 附：注射剂调制原则 ①处方中得毒药、麻醉药、防腐药、助溶剂或溶解度小得药物，应先加入溶解。 ②处方中得各种药物的溶解度都是很大的，可以加在一起溶解。 ③处方中有些药物难溶而需要用助溶剂的，可分别溶解后加在一起混合。 ④固体颗粒较大或难溶药物，可先进行研磨并溶解在 1/3-2/3 的溶剂中，并搅拌加速溶 解，然后加入其余溶剂。药物耐热的可加温助溶。 ⑤待全部药物溶解后进行过滤，滤材的选择应考虑液体的性质，可选择精致棉花纱布、 滤纸、玻璃纤维或石棉等。 ⑥药物的灭菌， 可根据药物的性质分别用煮沸灭菌或高压灭菌， 不能用高温灭菌的药物 应无菌操作配制。 （二）乳剂的调制――滴滴涕乳剂的调制 【实验目的】掌握乳剂的调制方法。 【实验药品】滴滴涕粉，煤油，煤酚皂溶液，软肥皂，温水等。 滴滴涕乳剂成分含量：滴滴涕 2.0 煤 油 18.0 煤酚皂 2.0 温 水 38.0 软肥皂 10.0 【实验器材】烧杯，量筒，乳钵，水浴锅，三角架，酒精灯，玻璃棒，天平等。 【实验方法】称取软肥皂 10 g，置于乳钵内，徐徐加入温水 38 mL ，研磨至乳状再加煤酚 皂溶液继续研磨，得①液；量取煤油 18 mL 放于烧杯内，置于水浴锅上，称取滴滴涕粉 2.0 g 徐徐加入同事搅拌之，使其充分溶解，得②液。然后将②液徐徐向①液中填加，同事搅拌 混合，至全液呈乳状即可。 附：乳剂得配制原则 取乳化剂+少量水和不溶性物质研合成糖浆+缓慢加余量水研磨搅拌全液呈乳状即可。 （三）酊剂的调制――碘酊的调制 【实验目的】通过实验掌握酊剂的调制方法。 【实验药品】碘，碘化钾，乙醇，蒸馏水等。 【实验器材】量筒，烧杯，洗瓶，棕色瓶，胶头滴管，药匙，天平，硫酸纸，玻璃棒等。 【实验方法】 1、配制 75%酒精 Rp： 取：Alcohol conc. 75 浓酒精 75 Aqua ad. 95 蒸溜水加至 95 D.S. 外用 用法 外用 注： 浓酒精指 95%酒精 2、配制 2%碘酊 Rp： 取： jodi 2.0 碘 2.0 Kalii jodati 1.5 碘化钾 1.5 Alc dil ad. 100.0 稀酒精加至 100.0 D.S. 外用 用法 外用 注： 稀酒精指 50%酒精 调制方法： 1、95%酒精稀释成 75%的稀酒精： 取 75mL 95%的酒精加蒸馏水至 95mL，即成。 2、 将少量 50%的稀酒精置于 100mL 量筒内， 加入 1.5 克碘化钾， 搅拌溶解后再加碘； 边加 50%的稀酒精边搅拌，使之溶解后总量为 100mL。 （四）搽剂的调制――松节油搽剂的调制 【实验目的】了解搽剂的调制方法 【实验药品】樟脑末，松节油，软皂，蒸馏水等。 【实验器材】乳钵，磨口瓶，量筒，天平，硫酸纸等。 【实验方法】先将称好的樟脑和软皂在乳钵内充分研磨，再徐徐加入松节油搅拌成糊状，然 后将此糊状物倒入磨口瓶中，加进所需的蒸馏水，密闭振摇，最后得白色乳状液。 松节油搽剂成分含量：樟脑末 8.0 松节油 65.0 软 皂 7.5 蒸馏水 加至 100.0 二、半固体剂型的调制 （一）软膏的调制――氧化锌软膏的调制 Rp： 取： Zinci Oxydati 1.5 氧化锌 1.5 Vaselini 2.5 凡士林 2.5 M. F. Unguetum 混合制成软膏 D.S. 外用 用法 外用 调制方法： 根据上述处方，称取所用之药置于研钵中研细后，取出置于软膏板上，取赋形药少许 进行初步研合，然后再添加余量，使其达到要求之量，并继续充分研合均匀。一般由于选用 基质(赋形药)不同，又有不同的调制法，一般可分两种调制法： ①研合法：此法多适用于 柔软基质的软膏调制，如：凡士林、猪脂、羊毛脂等作基质药时。②熔合法：此法多用于较 坚硬固形基质的软膏调制，如蜂蜡、石蜡作基质药时，采用此类赋形药如不加温使其熔化， 是很难与主药充分混匀的。 熔和法调制如下： ①先吸取固形药的基质，盛装于容器内，置于水浴加热，使其溶化。 ②然后把处方中遇热不起变化的其它药物加入， 同时搅拌混匀， 然后再将已称取并研磨 细的主药与基质充分混合。 ③将混合均匀的制剂放冷凝固即成。软膏剂的基质药(赋形药)选择条件： ①凡作为软膏剂的基质药，必须是性质稳定、遇光、空气及药物时不变质、易与主药混 合、不妨碍主药疗效的药物。 ②基质药吸收难易可做如下选择：凡士林、猪脂、羊毛脂、蜂蜡、石腊等。 （二）糊剂的调制――氧化锌糊剂的调制 【实验药品】氧化锌，淀粉，凡士林等。 【实验器材】烧杯，研钵，天平，水浴锅等。 【实验方法】称取凡士林置于烧杯内，在水浴锅上加热熔化，另称取氧化锌和淀粉同置于研 钵内研合，研细后再向已熔化的凡士林内徐徐加入，同时用力搅拌，混合至均匀放冷即成。 氧化锌糊剂成分含量： 氧化锌 2.5 淀 粉 2.5 凡士林 15.0 三、固体剂型的调制 散剂的调制――健胃散的调制 【实验目的】通过散剂的调制，了解固体剂型的调制方法。 【实验药品】龙胆，大黄，人工盐，碳酸氢钠等 【实验器材】研钵，天平，药勺，包装纸等。 【实验方法】按处方中各药的剂量称取龙胆、大黄、及人工盐，将一部分置于研钵内研细混 合后，再加残部的人工盐和碳酸氢钠，并继续研合至均匀的粉末，便可按所要求的量进行分 包供用（可进行包药练习，包药纸一般在调剂习惯上，普通药品多用白纸，剧毒药品用红色 纸，毒品用兰色纸。 ） 健胃散各成分含量：龙 胆 30.0 大 黄 15.0 人 工 盐 60.0 碳酸氢钠 35.0 附：调剂原则 ①处方中各药必须粉碎过筛，达到合乎规定的细度。 ②处方中各药要混合均匀， 故混合时必须采用等量递加稀释法混合。 比重小的先放入研 钵内，再加入比重大的。量大的有色药物逐渐加入量小的有色药物中，混合时间一般不少于 5 分钟或研磨 40 次以上。 ③处方中如有剧毒药，应先加入稀释散（或称倍散） 。 ④处方中原药含有水分或液体成分者，应先除去水分或加赋形剂后再行混合。 【讨论题】结合实验讨论药物剂型的种类及其概念和调制方法.通过对某些制剂的调制谈谈 体会。实验七 实验七 药物作用实验【实验目的】 观察药物对动物机体的反射作用、 局部作用、 吸收作用、 拮抗作用和协同作用， 以加深对其作用原理及临床意义的理解。 一、药物的反射作用 【实验药品】1.0%硫酸阿托品注射液，麻醉乙醚。 【实验动物】家兔 【实验器材】兔手术台，贴红色及兰色小旗的长针，剪毛剪，镊子，酒精绵，脱脂棉，注射 器，5 号针头等。 【实验方法】取一只家兔，仰卧固定在手术台上，于左胸区 3-5 肋间心脏明显处，将贴红旗 的长针刺入心包；在季肋部，将贴兰旗的长针刺入膈肌。然后记录正常心跳、呼吸数。把蘸 有乙醚的棉球放在兔鼻附近， 使其吸入乙醚， 观察心跳和呼吸有无变化。 由耳静脉注入 1.0% 硫酸阿托品 0.5-1.0 mL，5-10 分钟后，再吸入乙醚，观察心跳和呼吸是否有变化。 【记录表】 心跳次数/分 正 常 呼吸次数/分吸入乙醚 注射阿托品后 再吸入乙醚 【讨论题】 何为反射作用？为什么使用阿托品后， 再吸入乙醚， 家兔心跳和呼吸变化不明显？ 二、药物的局部作用和吸收作用 【实验药品】松节油（Oleum terebinthinae） 0.1%硝酸士的宁（Strychninum Nitricum） 。 麻醉乙醚（Aether pro Narcosi） 。 5%水合氯醛（Chloralum Hydratum） 。 【实验动物】家兔 【实验器材】镊子，台秤，注射器(1mL，5mL)，针头，兔用麻醉口罩（如无可用小茶缸代 替） ，脱脂棉，酒精绵，剪毛剪等。 【实验方法】 1、取兔一只，保定，然后对光仔细观察兔两耳血管的粗细、颜色、温热感等情况，观 察清楚后，用蘸有松节油的棉球涂擦左侧耳部，过 2 分钟后，再对两侧耳部进行上述几项的 观察，看涂药前后有何变化？ 2、取家兔一只，放在实验台上，观察其正常活动，然后用镊子等适度敲击兔背部、四 肢等处，观察其有何反应。然后称其体重。 按 0.4 ml/kg 剂量给兔皮下注射 0.1%硝酸士的宁，并注意观察家兔的反应，每隔几分钟 用镊子轻击背部、四肢，观察家兔有何反应。 待家兔出现呼吸困难、全身痉挛、角弓反张等较典型的士的宁药物中毒症状时，立即给兔套 上有麻醉乙醚的口罩，然后再观察兔的反应。 当兔的中毒症状消失时，出去麻醉口罩，于耳静脉注射 5%水合氯醛溶液，以 2-3 ml/kg 体重 的剂量给予，然后再观察家兔的反应。 【讨论题】 在仔细观察的基础上， 详细记录实验结果， 并进行理论分析， 指出哪种作用是局部作用？ 哪种作用是吸收作用？三、药物的协同作用和拮抗作用 【实验药品】1%硝酸毛果芸香碱（Pilocarpinum Nitricum） 0.1%盐酸肾上腺素溶液(Sol Adrenalini Hydrochlorici) 1%硫酸阿托品（Atropinum Sulfuricum） 【实验动物】家兔 【实验器材】兔保定台，游标卡尺，注射器，针头（5 号）等。 【实验方法】 1、取兔一只，放于实验台上，药严防阳光照射兔的眼睛。用游标卡尺测量两侧眼睛的 瞳孔大小，连测三次，取其平均值。 （注意：测量瞳孔时光线强度要一致，游标卡尺不宜触 及角膜。 ） 2、于兔的左眼滴入 1%硝酸毛果芸香碱溶液 3 滴，15 分钟后再测量左眼瞳孔大小，连 测三次，取其平均值。 （注意：滴药时，用左手的拇指和食指将下眼睑向上提起，使成囊状， 再用中指压在鼻泪管开口处，以防药液流入鼻泪管而起不到作用，再用右手滴入药液。 ） 3、滴入 1%硝酸毛果芸香碱后 20 分钟左右，分别在两眼滴入 0.1%盐酸肾上腺素溶液 3 滴，15 分钟后测量两眼瞳孔大小，连测三次，取其平均值，并进行比较。 4、在滴入 0.1%盐酸肾上腺素溶液后 20 分钟左右，再往两眼滴入 1%硫酸阿托品溶液 3 滴，15 分钟后观察两眼瞳孔的变化，并测量瞳孔大小。连测三次，取其平均值。 【记录表】滴入药物 滴 药 前 1%硝酸毛果芸香碱 0.1%盐酸肾上腺素 1%硫酸阿托品次数 1 被测部位 大 瞳孔大小 小 2 3 均数 1 2 3 均数 1 2 3 均数 1 2 3 均数【讨论题】 说明哪些现象是药物的协同作用？哪些现象是药物的拮抗作用？药物的这两种作 用有何临床意义？ 注：如无兔，可改用下面实验来观察药物的协同作用和拮抗作用 【实验药品】1%戊巴比妥钠溶液 4%苯甲酸钠咖啡因溶液 10%戊四氮溶液 生理盐水等。 【实验动物】蛙或蟾蜍 【实验器材】受皿天平，注射器，烧杯等。 【实验方法】 取大小相似的蛙三只， 编号， 称体重， 观察其正常活动后， 号蛙以 0.1 mL/10g 1 的剂量，于腹淋巴囊处注射 1%戊巴比妥钠溶液，2 号蛙以同样的剂量同样部位注射 4%苯甲 酸钠咖啡因溶液，3 号蛙仍以 0.1 mL/10g 的剂量，往腹淋巴囊处注入生理盐水。10 分钟后 观察三只兔活动情况；并均以 0.1 mL/g 的剂量往淋巴囊里注射 10%戊四氮溶液。观察蛙惊 厥出现的情况及快慢、强弱有何不同。 【记录表】 项目 蛙重 蛙号 1 蛙状态 的药物 后蛙状态 氮后蛙状态 结果 给药前 各蛙应注入 给药 10 分钟 给 10%戊四 最终2 3 四、药物的选择作用 【实验目的】通过实验理解选择作用的概念及其临床应用。 【实验动物】蛙 【实验药品】 2%戊巴比妥钠（Pentobarbitalum Natricum） 0.5%毒毛旋花子甙 K（Sol Strophanthini-K） 0.9%氯化钠（Natrii Chloridum） 【实验器材】蛙板，大头针，注射器，手术剪，手术刀，眼科剪，记纹鼓，蛙心夹，蛙心描 记器，墨水等。 【实验方法】 1、取大小相近的蛙三只，甲乙丙编号，观察正常活动后，分别使其仰卧，并固定于蛙 板上。 2、将三只蛙打开胸腔，暴露心脏.装好蛙心夹及描记杠杆，描出正常心肌收缩曲线。 3、从下颌淋巴囊给甲蛙注射 2%戊巴比妥钠溶液 0.5-1.0 mL，乙蛙注射 0.5%毒毛旋花 子甙 k 溶液 1.0 mL，丙蛙注射生理盐水 1.0 mL。 4、待乙蛙心率有明显改变时，再比较描记三只蛙心脏收缩曲线。 5、最后将三只蛙解除固定，比较其肢体活动有何差异。【记录表】 蛙 用 药 前 心率 收缩曲线 肢体活动 甲 药物 (ml) 2%戊巴比妥钠 溶液 0.5-1.0 0.5%毒毛旋 花子苷 K1.0 生理盐水 1.0 心率 用药后( )分钟 收缩曲线 肢体活动乙丙【讨论题】分析、比较实验结果，说明什么是药物的选择作用？实验八 实验八 药物的配伍禁忌【实验目的】了解药物配伍禁忌的种类、概念及特点。 【实验动物】家兔 【实验药品】液体石腊，樟脑酊，水合氯醛，氯化钙，硫酸镁，肾上腺素，碳酸氢钠，硝酸 毛果云香碱，硫酸阿托品，樟脑，稀盐酸，亚硝酸钠等。 【实验器材】试管，研钵，天平，量筒，注射器（2 mL）2 支。 【实验方法】 物理性配伍禁忌： 一、物理性配伍禁忌：两种或两种以上药物配伍时，发生物理性的变化,而不产生新的物质。 1、分离：如油与水不能相混合 液体石腊（Paraffinum Liquiclum） 5 mL 常 水（Aqua Commumis） 5 mL 二药相混合后，静止不久，又能分层。 2、析出：两种液体相互混合后，其中一种药物析出，产生沉淀或浑浊，但没有改变化学性 质。如： 樟脑酊（Tinctura camphorae） 5 mL 常 水（Agua Communis） 5 mL 可见樟脑析出 3、潮解：含结晶水的两种药物共同研磨，因结晶水析出而会变湿润。 注：许多药物在保存期间因密封不好而发生潮解。这是通常见到的物理变化。阿司匹林 （Asprinum）3 g+安替比林（Antipyrinum) 3 g 共同研磨。 4、液化：两种药物粉末混合研磨。 水合氯醛（Chlorali Hdras）3 g+樟脑（camphora）3 g 共同研磨。 化学性配伍禁忌： 二、化学性配伍禁忌：两种药物相混合后，产生化学变化，生成新的物质。 1、产生沉淀：氯化钙与硫酸镁 CaSO4 + MgCl2 5%CaCl2 2mL + 25%MgSO4 2mL 2、产生气体：碳酸氢钠与稀盐酸 CO2 + NaCl + H2O 5% NaHCO3 2mL + 稀盐酸 2mL 3、变色： 两种药物混合，因变色而失效。 0.1%肾上腺素 1mL + 3%NaNO2 1mL 颜色变化 4、爆炸或燃烧 氧化剂与还原剂混合研磨易爆炸或燃烧。 三、药理性配伍禁忌 1%硝酸毛果芸香碱（Pilocarpium Nitricum）分别给两只家兔肌注 0.5mL/kg 体重，当唾 液分泌显著后，给其中一只家兔肌注阿托品 0.5mL/kg 体重。 （1%硫酸阿托品 Atropinum Sulfuricum） 。注射后继续观察两只家兔的唾液分泌情况，并分析之。 【讨论题】结合实验现象讨论配伍禁忌的种类及不同点。实验九 尼可刹米的呼吸兴奋作用【实验目的】学习常用呼吸活动的记录法，了解尼可刹米等中枢兴奋药对呼吸抑制的抢救作用。【实验原理】尼可刹米选择性兴奋延髓呼吸中枢,亦作用于颈动脉体化学感受器而反射性兴奋呼吸中枢提高呼吸中枢对 CO2 的敏感性，使呼吸加深加快。对血管运动中枢有轻度兴奋 作用。 本品作用温和，安全范围大，故临床用于各种原因引起的中枢性呼吸抑制，对阿片类药 物中毒所致呼吸抑制效果较好，可首选。本品作用维持时间短，静注仅维持 10min 左右，故 常需间歇静脉给药。【实验材料】1、动物 家兔。 2、器材 固定箱，电子称，二道记录仪，兔鼻插管，玛利氏气鼓，铁支架，双凹夹，注射 器。 3、药品 1.5％盐酸吗啡溶液，2.5％尼可刹米溶液，液体石蜡。【实验方法】取家兔 1 只，称记体重，放置兔于固定箱中。将连在玛利氏气鼓上的鼻插管涂上液体石 蜡后插入家兔一侧鼻孔内，用胶布固定。玛利氏气鼓与二道记录仪的机械转换器连接，调整 好适当的描记曲线，开始记录。 先记录正常呼吸曲线一段。自耳缘静脉缓慢注射盐酸吗啡 1.5％溶液 1 mL/kg，连续描 记。当出现明显呼吸抑制时，立即静脉缓慢注射尼可刹米 2.5%溶液 2 mL／kg，观察描记呼 吸曲线的变化(幅度和频率)。图 9-1家兔呼吸描记装置（引自：动物机能实验教程.白波.2004）【记录表】项 目 正常 给吗啡后 给尼可刹米后呼吸幅度（mm）呼吸频率（次/min）【注意事项】1、注射吗啡应缓慢，以便控制剂量到刚能引起间歇性的陈施二氏呼吸。 2、注射尼可刹米宜慢，便于控制剂量，避免惊厥发生。【思考题】为什么尼可刹米较适用于吗啡急性中毒的解救？使用时应注意什么？实验十 各种泻剂机理实验【实验目的】通过实验理解各种泻剂的下泻原理。 【实验动物】家兔 【实验药品】0.1%新洁尔灭（溴苄烷铵） （Benzalkonii Bromidum） 0.5%盐酸普鲁卡因（Procaini Hydrochloridum） 5%硫酸钠（Natrii Sulfas） 液体石蜡（Paraffinum Liquidum） 蓖麻油（Oleum Ricini） 0.9%氯化钠 (Natrii Chloridum） 【实验器材】兔保定台，手术刀，手术剪，止血钳，剪毛剪，镊子，电炉，针头，注射器， 丝线，棉花，纱布，大烧杯，玻璃棒等。 【实验方法】取家兔一只，仰卧固定于兔保定台上，腹部剪毛，消毒，用普鲁卡因局部麻醉 (浸润麻醉法)，待局部麻醉后，切开腹壁，暴露肠管，取出一段小肠同时用浸有温生理盐水 的纱布围好。用丝线将小肠结扎分成四段(最好间隔开)每段长在 1.5cm-2.0cm，并使其互不 相通。手术完毕后，将上述四段小肠分别注入 5% 硫酸钠、液体石蜡、蓖麻油、 0.9 %氯化 钠，注入量视小肠管腔充盈度适中为宜，注入量应相等。给完药后，将肠段送还腹腔，缝合 腹壁（或用止血钳夹住切开的两侧腹壁，使其关闭腹腔。 ）并以浸有温生理盐水或台氏液的 脱脂棉或纱布覆盖，以保持温度和湿润局部。 1-2 小时后，再取出肠段观察各段管腔的变化（如肠管充盈度情况与充血程度等） ，最 后用注射器抽出各段肠管内的液体，比较其容量，并剪开肠壁，观察肠壁充血情况。将观察 到的情况写入自己设计的记录表格内。 注：①打开腹腔后，应尽量减少对肠管的刺激，并以少量生理盐水或台氏液湿润之。 ②药物用量视肠段膨胀程度而定，一般以肠段中度膨胀为准，各段肠药物容量应相等。 ③抽取肠内液体时，应尽量吸净，否则影响结果的比较。 ④本实验亦可用大白鼠、小白鼠、蛙来做。实验时，肠段可 1.5-2.0 cm 长即可，注入药 物容量为 0.1 ml。 【讨论题】分析讨论各种泻剂的作用机理及其选择应用。实验十 实验十一 消沫药的消泡沫作用观察【实验目的】观察不同消沫药在体外的消泡沫作用 【实验材料】 药物：松节油、煤油、10%烟叶水、1%肥皂水。 器械：试管架、烧杯、滴管、滴瓶。 【实验方法】 取三支试管各加入 1%肥皂水约 5 mL， 用力振荡使之产生大量的泡沫， 其后分别滴入松 节油、煤油、10%烟叶水各 3-5 滴，静置于试管架 ，观察各试管泡沫消失速度。 【记录表】 药物 试管号 消沫情况（min） 松节油 1 煤油 2 10%烟叶水 3讨论： 就实验结果，分析比较各药的作用。实验十二 实验十二 强心药对离体蛙心作用观察【实验目的】观察强心苷、咖啡因、肾上腺素对离体蛙心的作用，并掌握每种药物的作用特 点。 【实验动物】蛙（或蟾蜍） 。 【实验药品】任氏液，0.04 mg/ml 毒毛旋花子甙 K 溶液（Sol Strophanthini- K） ，0.1%盐酸肾 上腺素溶液（Sol Adrenalini Hydrochlorici） ，2%安钠咖溶液（Sol Coffeini natrio-benzoici） 【实验器材】记纹鼓，描记杠杆，蛙心套管，试管夹，蛙板，大头针，蛙心夹，长滴管，铁 支架，烧杯，长刺针，手术剪，手术刀，眼科剪，虹膜镊，丝线，墨水，记录纸，浆糊等。 【实验方法】将已插好蛙心套管的离体蛙心（离体蛙心制作见后“附” ）安装到记纹鼓上， 描记一段正常曲线，然后用下列药物逐次滴入套管内，每试完一种药物，即行吸出，更换任 氏液，并反复用任氏液冲洗数次（3-4 次） 。 A：2%安钠咖溶液 2-3 滴 B：0.1%盐酸肾上腺素溶液 2-3 滴 C：0.04mg/ml 毒毛旋花子甙 K 溶液 2-3 滴 注：有条件的话，可制成三个离体蛙心，分别描记于记纹鼓上，然后向甲、乙、丙三个 离体蛙心内分别加入上述三种药物，再进行描记。【记录表】 反应 描 绘 曲 线 图 药物 用 药 前 苯甲酸钠咖啡因 盐酸肾上腺素 毒毛旋花子苷 K 【讨论题】根据描绘的曲线图（幅度、频率等）谈谈这三种药物对心脏的作用特点。实验十三 强心药对在体蛙心作用观察【实验目的】熟悉在体蛙心实验操作，观察强心药对在体心脏的作用。 【实验动物】蛙（或蟾蜍） 【实验药品】2%氯化钾溶液，洋地黄毒甙注射液，0.1%肾上腺素。 【实验器材】手术刀，眼科剪，眼科镊，组织针，手术剪，蛙板，蛙心套管，蛙心夹，丝线， 记纹鼓，描记杠杆，墨水，滴管，支架等。 【实验方法】 1、取一只蛙，破坏脊髓后仰卧固定于蛙板上。 2、剪开皮肤及肌肉，并将胸骨剪开，暴露心脏将心包打开，用连有丝线的蛙心夹夹在 蛙心尖，将丝线连于描记杠杆，描划正常心收缩曲线。 3、向心尖滴加 2%氯化钾溶液 3-5 滴，观察曲线有何变化？请计录。 4、再由股部皮下注射洋地黄毒甙注射液 0.5 ml，描记曲线，并观察对比曲线的变化。 5、给过量洋地黄后，用氯化钾皮下注射 1ml.观察心缩曲线的变化。 6、用过量的氯化钾后，心跳停止时，再心内注射 0.1%肾上腺素 0.2 ml，观察心跳恢复 跳动曲线，并比较各段曲线的收缩幅度、节律有何变化。 【讨论题】观察记录曲线，分析心脏在不同药物作用下所发生的收缩曲线改变原因和机理。 并讨论利用在体心脏和离体心脏观察强心药的作用各有何优缺点。实验十四 实验十四 止血药及抗凝血药的作用观察【实验目的】观察和了解止血药及抗凝血药对血凝过程的影响。 【实验动物】家兔 【实验药品】0.125%止血敏注射液，液体石蜡，4%柠檬酸钠溶液，0.02%肝素钠溶液，生理 盐水等。 【实验器材】兔保定台，毛细玻璃管，剪毛剪，酒精棉，镊子，粗针头，1ml 注射器，秒表， 试管，试管架等。 【实验方法】 一、止血敏对血凝的促进作用 1、取家兔一只，剪去耳缘长毛，以酒精棉擦净，待酒精干后，再涂以液体石蜡，以防 血液凝固。 2、用粗针头将耳缘静脉刺破，开动秒表，并迅速以毛细玻璃管吸取血液，每隔半分钟 折断毛细玻璃管 3-5mm，并缓慢向左右拉开，观察折断处是否有血丝，至丝状血凝物出现时 为止，所历时间即为该兔的血凝时间。 3、由家兔耳静脉注入止血敏 0.5g，过 20min 后，再按上法吸取血液，每隔 10 秒钟折 断一次，观察何时出现丝状血凝物。比较用药前后凝血时间有何变化。 【记录表】 凝 用 用 药 前 药 后 血 时 间注：毛细玻璃管采血后，不宜长时间拿在手里，以免体温影响血凝时间。 【讨论题】除止血敏外，临床常用止血药还有哪些？各有何作用特点？ 二、抗凝血药作用观察 1、取小试管 3 支，编号。 2、向甲试管内加入 4%柠檬酸钠溶液 0.1 ml，乙试管内加入 0.02%肝素钠溶液 0.1 ml， 丙试管内加入生理盐水 0.1 ml。 3、向甲、乙、丙三支试管内均加入兔新鲜血液 1 ml，摇匀后置于试管架上 20min 左右， 观察各试管中血液有无凝血现象。 【讨论题】从实验结果谈谈抗凝血药的作用特点。实验十五 实验十五 利尿药的利尿作用【实验目的】观察利尿素和速尿的利尿作用 【实验动物】家兔 【实验药品】2%戊巴比妥钠（Pentobarbitalum Natricum） ；3%利尿素（Diuretine） ；1%速尿 （Furosemidum） ；0.9%氯化钠（Natrii Chloridum)。 【实验器材】手术台，台秤，手术刀，手术剪，止血钳，镊子，剪毛剪，膀胱套管，烧杯， 量筒，记时器，酒精棉，碘酊棉，纱布，脱脂棉，眼科剪，玻璃分针等。 【实验方法】 （一）插膀胱套管 1、取家兔一只，称重后以 2%戊巴比妥钠 1 ml/kg 体重耳静脉注射，使兔麻醉后仰位固 定于手术台上。 2、先剪去耻骨联合与脐之间的长毛，再于耻骨联合上部，沿腹白线切开皮肤 3-4 厘米， 切开腹壁肌肉及腹膜找出膀胱。 3、用丝线将膀胱附近尿道结扎，然后在膀胱侧壁作一直径 2 cm 的荷包缝合，留出两端 线头以备结扎时用，避开切口作一厘米长的切口，插入连接胶管的膀胱套管（其中充满液体 再用止血钳夹住）需对准两输尿管出口，再结扎固定。 4、松开止血钳，尿液经胶管滴出。轻轻将膀胱连同膀胱套管送入腹腔，用止血钳将腹 壁夹住作假缝合。将胶管口下端接好烧杯，开始计滴。 （二）过程 1、先静脉注射 30 毫升生理盐水，记录 10 分钟内的尿量。记录每分钟尿液滴数作给药 前尿液的正常值。 2、待尿液滴数恢复正常后，依次静脉注入 3%利尿素溶液 2.0 ml/kg 体重，1%速尿注射 液 2.0 ml/kg 体重，观察其尿量有何变化？ 【记录表】 用 药 后 速 尿用药前利 尿 素 每分钟排尿滴数【讨论题】结合实验现象，分析比较各种利尿药的利尿作用原理及其临床选择应用。 注：本实验动物可用小白鼠，具体操作如下。 1、取体重 18-22 g 的小白鼠两只，分别腹腔内注射蒸馏水各 1 ml，并行称重； 2、甲鼠皮下注射速尿 0.1 ml，乙鼠皮下注射同容量的生理盐水。 3、将甲、乙两鼠分别置于大漏斗中，同时其上覆盖平皿（应留有通气孔道） ，漏斗下连 有量筒，然后观察并收集尿液。 4、经过 30 min 及 60 min 后，比较两个量筒内的尿量，同时对小白鼠称重。肾上腺素对黏膜 黏膜和皮肤血管的收缩作用 实验十六 肾上腺素对黏膜和皮肤血管的收缩作用【实验目的】观察和了解肾上腺素对黏膜皮肤血管的收缩作用 【实验动物】家兔 【实验药品】0.1%盐酸肾上腺素（Adrenalinum Hydrochloricum） 【实验器材】兔保定台，注射器，针头等。 【实验方法】 1、取家兔一只，观其两侧眼结膜的颜色，血管分布情况。 2、向右侧结膜囊内滴入 0.1%盐酸肾上腺素，观察其结膜颜色和血管有何变化，左侧结 膜作为对照。 （滴入量为 3-4 滴） 注：滴药时，用左手的拇指和食指将下眼睑向上提起，使成囊状，再用中指压在鼻泪管 开口处，以防药液流入鼻泪管而起不到作用，再用右手滴入药液。 【讨论题】 1、肾上腺素强心作用的特点是什么？ 2、肾上腺素对血管的作用有哪些？实验十七 实验十七 水合氯醛的全身麻醉实验 及咖啡因的苏醒作用观察【实验目的】 观察全身麻醉过程， 理解全身麻醉药对神经系统的药理作用和咖啡因的苏醒作 用。 【实验动物】家兔。 【实验药品】 10%水合氯醛 （chloralum hydratum） 20%安钠咖 ； （caffeinum et Natrii Benzoas） ； 0.9%氯化钠（Natrii chloridum） 。 【实验器材】灌肠胶管，注射器（10ml、5ml 各一支） ，台秤，体温计，听诊器，小镊子， 酒精棉，碘酊棉等。 【实验方法】取两支健康家兔（甲，乙） ，观察其正常体温、呼吸、心率等。一般兔体温正 常为 38.5-39.5℃，呼吸正常时 10-15 次/分，在紧张情况下可为 60 次/分或更多，心跳正常时 120-140 次/分；还要观察瞳孔变化及肌肉紧张度等。 甲兔：给 10%水合氯醛灌肠，按 0.1-0.3 g/kg 体重给予。 乙兔：给 0.9%氯化钠溶液，按 2 ml/kg 体重给予，作为对照。 给药后测其体温、心跳、呼吸、瞳孔、肌肉紧张度、痛觉反射、角膜反射等。观察麻醉 各期现象，然后对被麻醉甲兔再肌注 20%安钠咖溶液 2ml，观察发生什么变化？ 【实验讨论题】 1、非吸入麻醉药的分期如何？ 2、本实验给予安钠咖的药理作用如何？实验十八 钙镁离子对抗作用观察【实验目的】 观察和了解硫酸镁注射液经肌肉注射法于兔所发生的症状及造成中毒后的解救 方法。 【实验药品】25%硫酸镁注射液，5%氯化钙注射液。 【实验动物】家兔 【实验器材】注射器（5 ml、10 ml 各 1 支） ，针头（6 号、7 号） ，酒精棉，镊子，台秤等。 【实验方法】取兔一只，称其体重，观察并记录兔及如紧张度、呼吸深度及次数、耳血管的 粗细及颜色。然后肌肉注射 25%硫酸镁注射液 3-5ml/Kg 体重，并注意观察兔有何反应，待 作用显著时（呼吸高度困难，四肢无力等） ，由耳静脉缓慢（！）注入 5%氯化钙注射液 5-6 ！ ml/Kg 体重，观察兔有何变化？ 注意事项： ①氯化钙注射液切勿漏出血管外。 ②所注氯化钙的剂量应依中毒症状改善的程度而定。 ③为使硫酸镁吸收良好，可分两侧臀部注射。注射后应轻轻按摩注射部位，以促使药液 的吸收。 ④因本实验要观察用药前后耳血管的变化情况，故不要抓兔的耳朵，以免影响结果。 【记录表】 观察项目 观察时机 给药前 给硫酸镁后 给氯化钙后 【讨论题】 1、肌肉注射硫酸镁注射液后，兔耳血管有何变化？为什么？ 2、通过本次实验观察，说明硫酸镁注射液的作用、作用机制、临床应用及应用注意。 3、氯化钙注射液为何能解硫酸镁所致的中毒 呼吸 体态 肌肉紧张力 次数/分 深度 耳血管实验十九 实验十九 解热镇痛药及氯丙嗪的降温实验【实验目的】观察解热镇痛药对人工发热家兔的解热作用及氯丙嗪的降温作用。 【实验动物】家兔 【实验药品】 10%氨基比林溶液 （Aminopyrinum） 10%安替比林溶液 或 （Antipyrinum） 30% ， 安乃近注射液（Analginum） ，1%盐酸氯丙嗪注射液（Chlopromazinum） ，0.9%氯化钠注射液 （Natrii Chloridum） 。 【实验器材】台秤，体温计，注射器，针头等。 【实验方法】 1、取健康成年家兔 4 只，称重，编号为甲、乙、丙、丁后，测量体温。 2、在实验前 5 小时左右用蛋白胨 1g/kg 体重(或每只注 10ml 灭菌牛奶）由肌肉分别注 射使其发烧，注射后每隔半小时检查一次，当体温增高 0.5-1℃以上时，注射解热药。 3、发热的甲兔静注（或肌注）10%氨基比林（或 10%安替比林）注射 2 ml/kg 体重。给 发热的乙兔静注（或肌注）静注（或肌注）30%安乃近注射液 2 ml/kg 体重，丙兔以同样途 径给 1%盐酸氯丙嗪注射液， 1 ml/kg 体重剂量给予， 以 丁兔则按 2 ml/kg 体重的剂量静注 （或 肌注）生理盐水，同时要记录给药时间。 4、给药后 30 分钟、1 小时各测体温一次，并记录用药前后体温变化情况。 【记录表】体温正兔号常用 药 前 （发热）用 药 物 30 分钟 氨基比林 安 乃 近 氯 丙 嗪 生理盐水药 后 60 分钟甲 乙 丙 丁【讨论题】实验结果说明什么问题？临床上应用解热镇痛药应注意什么问题？实验二 实验二十 抗菌药物的体外抗菌实验【实验目的】 通过实验了解常用抗菌药物的抗菌作用及抗菌范围， 并掌握抗菌药物的某些体 外抗菌实验方法 【实验药物】青霉素，链霉素，四环素，磺胺嘧啶钠等。 【实验菌种】金黄色葡萄球菌，大肠杆菌，绿脓杆菌，痢疾杆菌等。 【实验器材】镊子，酒精灯，火柴，玻璃铅笔，吸管，游标卡尺，试管，试管架，灭菌平皿， 铂金耳，恒温箱，pH 试纸，陶瓦盖等。 【实验方法】 一、纸片法 将已制备好的高柱肉汤琼脂培养基加热熔化后，待冷却至 50℃左右时，加入肉汤培养 基菌液 1 ml（经 37℃培养 18 小时的菌液） ，轻轻摇动使之混匀。然后倒入无菌的平皿内。 轻轻晃动平皿，以使培养基均匀地平铺再平皿上，待冷却凝固后，用消毒过的镊子将青霉素 干纸片①、链霉素干纸片②、四环素干纸片③、磺胺嘧啶钠干纸片④按下图的位置整齐有顺 序的放入平皿内，盖上陶瓦盖，标好记号，置 37℃恒温箱内培养 24 小时。24 小时后取出培 养基，用游标卡尺量取抑菌圈直径的大小并记录之，比较不同抗菌药物对金黄色葡萄球菌、 大肠杆菌的作用强度。 注：上述实验的整个过程应在无菌室内进行。 附：1. 抗菌药物干纸片的制备 将直径为 6 mm 的圆形定性滤纸消毒烘干后，分别浸入下列药物中：青霉素溶液 100 U/ml、链霉素溶液 0.2 mg/ml、四环素溶液 0.2 mg/ml、磺胺嘧啶钠溶液 20 mg/ml，使其充分 浸透药液， 然后用另一滤纸吸取附于纸片上多余的药液， 再置于 37℃恒温箱中烘干备用。 保 （ 持时间不宜过长） 高柱肉汤琼脂培养基的制备 牛肉膏 3.0、蛋白胨 10.0、氯化钠 5.0、蒸馏水加至 1 000.0、琼脂 18.0-22.0（根据气候 决定用量，即气温低时少加，气温高时多加） ，在电炉上加热，使上述各药全部溶解，再补 足加热过程中损失的水分，调节 pH 至 7.8，分装于试管内，每管 20 ml，高压灭菌后备用。 二、平皿二倍稀释法 取试管十支，依次编号，排列于试管架上，按无菌操作法用吸管吸取牛肉膏汤液体培养 基 30 ml，分别向 10 支试管内加入每支试管加 3 ml。 再用吸管吸取 8 000 u/ml 的青霉素溶液 3ml 加到第 1 支试管内，并反复吹匀；接着从第 1 支试管内吸出 3 ml 含有青霉素液的培养基加入第 2 支试管内，吹匀；再从第 2 支试管中 吸出 3 ml 液体放入第 3 支试管内，吹匀……依此法逐管按二倍稀释至第 10 管。 10 个无菌空平皿，每个平皿相对应的分别加入上述 1-10 管内的青霉素液各 1ml，并按 不同浓度在平皿盖上编号以区别。 然后在这十个平皿内， 分别加入融化的牛肉膏汤琼脂培养 基各 9ml，使每个平皿内最终的体积为 10ml。 （熔化的琼脂温度不宜太高，以防破坏青霉素） 加入牛肉膏汤琼脂培养基后，要立即摇动平皿，以使培养基与药物充分混匀。琼脂凝固后， 即成 400-0.8 u/ml 含药平板。 用铂金耳分别将已培养 16-18 h 的细菌菌种（如：金葡菌、大肠杆菌、绿脓杆菌、痢疾 杆菌等）划线接种于每个含药平板的不同区域，随即加入 37℃恒温箱内，培养 24 小时。24 小时后， 取出观察并记录不同细菌在不同浓度的药物平板上的生长情况。 使细菌不生长的最 小浓度即为药物的最低抑菌浓度。 【记录表】 菌种 药物 抑菌圈直径(mm) 判定金 葡 菌 大 肠 杆 菌 绿 脓 杆 菌 痢 疾 杆 菌青霉素 链霉素 四环素 磺胺嘧啶钠 青霉素 链霉素 四环素 磺胺嘧啶钠 青霉素 链霉素 四环素 磺胺嘧啶钠 青霉素 链霉素 四环素 磺胺嘧啶钠【讨论题】从实验结果，比较各抗菌药物的作用强度。防腐消毒药、 实验二十一 防腐消毒药、收敛药的作用观察【实验目的】了解防腐消毒药对蛋白液、肠黏膜、肝及皮毛的作用。 【实验动物】家兔肠（纵切暴露黏膜面） 、肝及皮毛、20%鸡蛋白液。 【实验药品】95%乙醇，75%乙醇，0.1%新洁尔灭，2%醋酸铅，2%明矾，0.1%硝酸银，10% 硫酸铜，5%鞣酸，10%氢氧化钠，3%双氧水，0.1%高锰酸钾等。 【实验器材】大试管，小试管，玻璃板，玻璃铅笔，剪子，镊子，滴瓶，量筒等。 【实验方法】1、取小试管 9 支，各加入 20%蛋白液 2 ml。然后向各试管分别加入下表左列 的药液⑴-⑼。请注意：乙醇约加 2ml，应沿管壁徐徐加入，重叠于蛋白液上，其它各药液 各加 2-3 滴即可，观察各管蛋白液发生什么变化？ 2、将三块纵切开的肠壁平铺在玻璃板上.使黏膜面向上，分别向黏膜面滴加药液⑺-⑼ 各 2-3 滴，5-10 分钟后用水洗去药物，观察黏膜发生什么变化？ 3、取家兔皮毛两小块，放入两支大试管中，然后分别向两试管中倒入药液⑻-⑼，静置 10 分钟后，观察皮毛发生什么变化？ 4、取家兔肝脏两小块，放入两支小试管中，然后分别向两管中倒入药液⑽和⑾，观察 管内药液发生什么变化？ 【记录表】 小试管 20%蛋白液 ⑴ 95%乙醇 ⑵ 75%乙醇 ⑶ 0.1%新洁尔灭 ⑷ 2%醋酸铅 ⑸ 2%明矾 ⑹ 0.1%硝酸银 ⑺ 10%硫酸铜 ⑻ 5%鞣酸 ⑼ 10%氢氧化钠 ⑽ 3%双氧水 ⑾ 0.1%高锰酸钾 【讨论题】 1、乙醇多大浓度杀菌力最强？为什么？ 2、重金属离子与蛋白质结合的紧密度同它的作用有何关系？ 3、酸与碱对蛋白质的作用有何不同？ 4、双氧水和高锰酸钾作用有何异同？ 玻璃板 肠黏膜 大试管 皮 毛 小试管 肝实验二十二 实验二十二 亚硝酸盐的中毒与解救【实验目的】观察亚硝酸盐中毒症状，了解亚甲蓝对亚硝酸盐中毒的解救作用。 【实验原理】 亚硝酸盐中毒时， 亚硝酸根离子可使血液中亚铁血红蛋白氧化为高铁血红蛋白 而丧失携氧能力。静脉注射小剂量的亚甲蓝（1-2mg／kg） ，在体内脱氢辅酶的作用下，还 原为无色亚甲蓝，后者能将高铁血红蛋白还原为亚铁血红蛋白，重新恢复携氧功能。 【实验材料】 1、动物 家兔。 2、器材 5 ml 注射器，8 号针头，镊子，酒精棉，台秤。 3、药品 3％亚硝酸钠注射液、0.1％亚甲蓝注射液。 【实验步骤】 1、取家兔一只称重。观察正常活动情况，检查呼吸、体温、口鼻部皮肤眼结膜及耳血 管颜色。 2、按 1-1.5 ml／kg 耳静脉注射 3％亚硝酸钠溶液。检查家兔上述项目的变化情况，待 眼结膜出现紫绀现象或口鼻部皮肤呈暗红色时，检查体温。出现典型中毒症状后，立即由耳 静脉注射 0.1％亚甲蓝注射液 2 ml／kg，观察中毒症状是否消除。 【记录表】 药 物 呼 吸 (次／分) 给 药 前 体 温 (℃) 口鼻及眼 结膜颜色 耳血管 颜 色 精 神 状 态给亚硝酸钠后 给亚甲蓝后【注意事项】 1、此实验宜选择白色家兔以便观察。 2、在 15-30 min 内疗效不显时，可重复注射一次；或者耳静注加有维生素 C 注射液的 葡萄糖类注射液。 3、中毒剂量为 0.3-0.5 g，致死量为 3 g。 【思考题】简述亚硝酸盐的中毒原理、中毒症状及亚甲蓝解毒原理。实验二十三 实验二十三 有机磷酸酯类中毒及其解救【实验目的】观察有机磷酸酯类中毒症状及阿托品和解磷定的解救作用。 【实验器材】 1、实验药品：5％ 敌百虫溶液、0.5％ 硫酸阿托品注射液、2.5％ 氯解磷定注射。 2、实验仪器：磅秤1台，兔固定器1台，注射器（2 mL、5 mL各1支；10 mL 2支） ，测 瞳尺1把、75%酒精棉球。 3、实验动物：家兔（2.5-3.5 kg）,♀♂兼用。 【实验方法】取家兔1只，称重，标记，观察下列指标：家兔的活动情况、呼吸频率、（次 /min）、有无唾液分泌、有无二便、粪便形态、有无肌震颤、瞳孔直径(mm)，将这些指标记 录在实验结果的表格内，然后将家兔放于固定器中固定，经耳缘静脉注射5％敌百虫溶液 （1.5-2.0 mL/kg） ，注射后将家兔从固定器中取出，观察给予敌百虫后的中毒表现(一般给 药后10-15分钟出现中毒症状，如果没有出现，再补加原药量的l/3即0.5 mL/kg)，并详细记 录；中毒症状明显（即家兔瞳孔缩小、唾液外流、呼吸困难、骨骼肌震颤等）后，立即给家 兔耳缘静脉注射0.5％硫酸阿托品(2 mL/kg)，观察并记录中毒症状缓解、消失情况，待唾液 分泌增多、瞳孔缩小、二便失禁等中毒表现明显减轻后，再经耳缘静脉给家兔注射2.5％氯 解磷定(0.4 mL/kg)，再观察并记录中毒症状缓解的情况。 【记录表】 观察指标 活动情况 呼吸频率 瞳孔直径 唾液分泌 有无二便 观察顺序 给 敌 阿 药 前 百 虫 托 品 （次/min） (mm) 肌震颤氯 解 磷 定 【注意事项】 ①敌百虫溶液静脉注射对家兔刺激性大，给药时应注意将家兔固定好，缓慢 给药，以免刺穿血管。②静脉注射时应从耳缘静脉的远端开始进针。 【讨论】 1、家兔有机磷酸酯类中毒的症状有哪些？ 2、有机磷酸酯类中毒的抢救原则是什么？ 3、有机磷酸酯类中毒应选择哪些药物抢救？这些药物分别对哪些中毒症状有效？
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