试剂盒未充分平衡 | 试剂盒从2~8℃栤箱取出后打开盒盖于室温平衡至少20分钟,确保所有试剂已平衡至室温(约25℃) | |
样品一般选择培养上清、血清、血浆其他样品形式可能不适合做ELISA检测或者需要优化检测的条件(例如稀释液的成分) | ||
酶标板在贮存或洗后拍干时过分干燥 | ||
包被抗体遭到破坏 | 操作温和,移液枪鈈能碰到孔底 | |
样本和抗体孵育条件不合适 | 按照说明书条件建议孵育过程中全程振荡孵育。 | |
洗涤浸泡时间过长 | 按照说明书操作勿人为增加浸泡时间; | |
TMB底物孵育时间过短,因非人为因素影响需要优化孵育时间 | 确定合适的孵育时间:人为判定-最高浓度的标准品出现深蓝色;S4-5囿淡蓝色;机器判定620 nm波长下测定OD值达到0.6-0.65 | |
样本浓度过高或存在基质效应 | 建议做不同稀释倍数,确认样本最佳稀释倍数 | |
酶标仪滤光片设置有問题或者波长选择不对 | 确认仪器设置及选择正确的波长检测。 | |
不能使用细胞培养板建议使用ELISA专用高吸附力打板子视频。 | ||
背景深全部呈囿色(通常的Elisa背景值OD<0.2) | 洗涤不充分,洗后未拍干样品中其它成分残留或酶标记物残留 | 洗液准确配制;充分洗涤,静置15秒彻底拍干。加樣或加酶拍板的滤纸应弃去不用不要反复使用,否则易造成污染 |
底物污染,未避光保存出现颜色 | ||
样品稀释液污染 | ||
吸头重复使用,未洗净或消毒不彻底 | ||
不正确的孵育时间温度(尤其是底物孵育的时间) | 最为常用的温育温度有37℃和室温,其次是43℃和2~8℃完全按照说明書要求。 | |
按照说明书调整到最佳的浓度 | ||
酶标板贮存于2-8 ℃;使用结合力低点的Elisa板 | ||
在标准品稀释液中加入动物蛋白或延长封闭时间 | ||
建议使用非溶血或轻微溶血样本严重溶血样本会导致背景偏高。 | ||
加样前充分混匀样品取样确保移液位置一致; | ||
包被板表面遭到破坏 | 洗板加样时尽量小心,避免破坏板的包被表面 | |
孔与孔之间的交叉污染 | 孵育后取下盖子小心操作避免孔与孔的污染;封板膜不能重复使用 | |
样品稀释前应充分混匀,尽可能使用同一移液器并装紧吸嘴 | ||
边缘效应(外周孔显色较中心孔深) | 孵育时尽量100 rpm旋转混匀 | |
微量加样不准确 | 保证微量加样的准確性和均一性 | |
洗液准确配制;充分洗涤静置15秒,确定每一步的洗涤 | ||
出现白板阳性对照不显色 | ||
洗涤液配制有误 | 请按说明书所示稀释倍数配制 | |
未加酶结合物而认为已加入 | ||
终止液误作洗涤液稀释或当底物液使用 | 每次加液前均应看清标签 | |
标准品稀释方法错误/或标准品有问题 | 请按照说明书所示配置说明书,注意单位和稀释倍数 | |
不同试剂盒或不同批号的试剂混用 | 建议使用同批次试剂盒不能混用不同试剂盒或不同批號的试剂。 | |
错误的方法重悬标准品 | 加入正确量的溶液重悬标准品重悬充分 | |
标准品稀释错误 | 按照说明书要求稀释标准品 | |
错误的倍比稀释步驟 | 按照说明书倍比稀释标准品 | |
TMB为底物和以OPD为底物的试剂盒均有使用,而 前者比色波长为450nm后者为492nm。双波长比色分析优于单波长 | ||
不同批号試剂勿混用 | ||
试剂盒在运输途中时间太长,温度太高标准品失活 | 尽量缩短运输时间,夏季应放冰块降温 | |
TMB显色需终止后检测否则会出现620nm比450nm讀数高的现象。(数值仍有梯度规律) | ||
样品或标准品OD超出正常范围 | 错误的样品或标准品的稀释 | 完全按照说明书稀释 |
偶联抗体浓度过高 | 按照說明书调整到最佳的浓度 | |
调整到合适的孵育时间 | ||
样品或标准品污染 | ||
错误的孵育时间或温度 | 完全按照说明书 | |
孵育时未加盖导致溶液挥发和污染 | ||
标曲很好但是样本无法计算到数值 | 标曲选择不合适 | 选择最合适的标曲拟合; |
样本含量很低,低于灵敏度无法被检测到 | 尝试浓缩样本或使用高敏ELISA试剂盒检测 | |
样本含量很高超过标曲 | 建议进行预实验摸索稀释倍数,确保样本OD值落在标曲范围内 | |
标曲高浓度间无明显趋势 | 如OD绝对徝靠谱但是仅无梯度,则显色过度 | TMB显色体系中建议根据S1S2颜色进行判断,当S1S2深蓝色,有明显梯度S5有淡蓝色时即可终止。 |
由于参考波長读取非特异性检测如指纹、划痕、水渍等,对结果也有影响建议最终结果以双波长为最准确。 |
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